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大鼠主動(dòng)脈內皮細胞培養實(shí)驗——貼塊法
發(fā)布時(shí)間: 2021-12-04 點(diǎn)擊次數: 967次材料與儀器
雄性Wistar大鼠
DMEM 胎牛血清 內皮細胞生長(cháng)因子 肝素鈉 青鏈霉素 明膠 胰蛋白酶 PBS D-Hanks’液
手術(shù)器械 眼科剪 眼科鑷 培養皿 手術(shù)刀 培養瓶 CO2培養箱步驟
1. 頸椎脫臼處死大鼠,將整個(gè)大鼠浸泡于75%乙醇中消毒約1 min。在無(wú)菌狀態(tài)下,逐層剪開(kāi)胸腔,分離取出主動(dòng)脈,放含無(wú)菌 D-Hanks’液培養皿中。
2. 用眼科剪、鑷盡量去除血管外膜的脂肪和纖維組織。然后,用含抗生素的D-Hanks’液沖洗血管的外表面及血管腔內的凝血數次,再放入另一無(wú)菌培養皿中。
3. 用眼科剪縱向剪開(kāi)血管,平展在培養皿中。用非常銳利的手術(shù)刀將其切成1 mm3大小的動(dòng)脈植 塊(或者用剪刀剪,依照個(gè)人習慣),然后種植到培養瓶或培養皿(培養瓶或皿用1%明膠預置 37℃下過(guò)夜, 使用前2h 移入CO2培養箱中。用時(shí)可以先經(jīng)含 10%小牛血清的培養液沖洗)。將動(dòng)脈植塊的內膜面與瓶底接觸,種植密度約為 1 塊/cm2 。
4. 置培養箱中靜置2 h(干貼壁)。然后,加入0.5 ml 含 25%胎牛血清的培養液,液量以略蓋過(guò)動(dòng)脈植塊內膜面,而又不使植塊漂浮為宜。24 h 后,更換培養液,加入 2-3 ml 培養液。
5. 72 h 左右的時(shí)候,當觀(guān)察到內皮細胞充分長(cháng)出,而成纖維細胞剛要長(cháng)出的時(shí)候,將動(dòng)脈植塊除去,刮除成纖維細胞,換培養液1 次。以后每2 天換液一次,每次換1/2~1/3 的液量。繼續培養 8-10 d, 細胞融合成單層,即可傳代。
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