一個(gè)小細胞可能會(huì )把人弄得吃不下，睡不著(zhù)，焦頭爛額？？？信不信還真的有這樣的事情 ，可能整個(gè)實(shí)驗下來(lái)計劃是三個(gè)月左右，但實(shí)際有時(shí)候出手的第一步就遇到了攔路虎，why？細胞總是養不好；天啊，馬上就到了三個(gè)月了，SO sad，下面我們就來(lái)看看細胞主要的培養步驟吧。

選對培養基很重要：

培養某一類(lèi)型細胞沒(méi)有固定的培養條件。在MEM中培養的細胞，很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長(cháng)?？傊?，一般首先選MEM做粘附細胞培養、RPMI-1640做懸浮細胞培養是一個(gè)好的開(kāi)始，各種目的無(wú)血清培養最好首先選的培養基。 

GlutaMAX-I是什么？培養細胞如何利用GlutaMAX-I？這個(gè)二肽有多穩定？

GlutaMAX-I 二肽是一個(gè)L-谷氨酰胺的衍生物，其不穩定的alpha-氨基用L-丙氨酸來(lái)保護。一種肽酶逐漸裂解二肽，釋放L-谷氨酰胺供利用。GlutaMAX-I二肽非常穩定，即使在121磅滅菌20分鐘，GlutaMAX-I 二肽溶液有最小的降解，如果在相同條件下，L-谷氨酰胺幾乎*降解。

酚紅在培養基中被用來(lái)作為PH值的指示劑：中性時(shí)為紅色，酸性時(shí)為黃色，堿性時(shí)為紫色。研究表明，酚紅可以模擬固醇類(lèi)激素的作用，（特別是雌激素）。為避免固醇類(lèi)反應，培養細胞，尤其是哺乳類(lèi)細胞時(shí)，用不加酚紅的培養基。由于酚紅干擾檢測，一些研究人員在做流式細胞檢測時(shí)，不使用加有酚紅的培養基。

培養基中丙酮酸鈉的作用是什么？

丙酮酸鈉可以作為細胞培養中的替代碳源，盡管細胞更傾向于以葡萄糖作為碳源，但是，如果沒(méi)有葡萄糖的話(huà)，細胞也可以代謝丙酮酸鈉。 

一旦您在新鮮培養基中添加了血清和抗生素時(shí)，您應該在兩到三周內使用它。因為一些抗生素和血清中的基本成分在解凍后就開(kāi)始降解。 

大部分添加物和試劑最多可以?xún)鋈?次，如果次數更多都會(huì )在包含蛋白的溶液引起一定水平的降解和沉淀，將會(huì )影響它的性能。這個(gè)特別在血清上體現的很明顯，有些血清沉淀特別多，客服都會(huì )告訴您這個(gè)是血清的析出蛋白，讓您不要離心直接使用也是這個(gè)原理 ，因為離心之后您的血清連那么點(diǎn)營(yíng)養蛋白都沒(méi)有啦 

38 在溶解的一周內使用貯存在4℃冰箱中的液體胰蛋白酶溶液。胰蛋白酶在4℃就可能開(kāi)始降解，如果在室溫下放置超過(guò)30分鐘，就會(huì )變得不穩定 

同時(shí)細胞的狀態(tài)也非常重要，有些老師認為，腫瘤細胞反正可以無(wú)限傳代，那么我就用之前傳過(guò)188代的細胞來(lái)做實(shí)驗又如何，要是細胞的形態(tài)好，可能真的沒(méi)有什么問(wèn)題，但是若細胞形態(tài)也不行，那要考慮是否用這個(gè)細胞了 ，一般細胞的形態(tài)不好涉及到三個(gè)方面：1.培養基使用的不對嚴重改變細胞的營(yíng)養環(huán)境，細胞為自救不得不變異以求生長(cháng)；2.操作手法不對，造成細胞污染等，3.傳代次數太多，因為每次傳代都會(huì )給細胞造成輕微的損傷，導致細胞在傳代之后不斷的修復，修復的細胞需要的衍生物，比如血清，培養基，可能會(huì )根據配方和批次的不同，給細胞造成不同程度的變異。

So easy的操作手法：

第一見(jiàn)細胞的時(shí)候，都不知道從何入手，太嬌貴了 ，怎么辦？其實(shí)，我們只要記住一點(diǎn)就可以了：無(wú)菌操作，無(wú)菌操作，無(wú)菌操作，重要的事情說(shuō)三遍，之后我們就可以放開(kāi)手腳，大干一場(chǎng)了。 

Step 1 ： 冷凍管應如何解凍？

取出冷凍管后，須立即放入37 C水槽中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1分鐘內全部融化，并注意水面不可超過(guò)冷凍管蓋沿，否則易發(fā)生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時(shí)，必須注意安全，預防冷凍管之爆裂。注意：復蘇不一定要離心，除少數特別注明對DMSO敏感之細胞外，絕大部分細胞株（包括懸浮性細胞），在解凍之后，應直接放入含有10-15ml新鮮培養基之培養瓶中，待隔天再置換新鮮培養基以去除DMSO 即可。

如此可避免大部分解凍后細胞無(wú)法生長(cháng)或貼附之問(wèn)題。 

Step 2:怎么培養？

培養關(guān)鍵點(diǎn)還在傳代操作，一想到傳代，天啊 ，會(huì )不會(huì )很復雜？首先我們要等到細胞到達80%-85%的密度再進(jìn)行操作，為什么是這個(gè)密度？因為這個(gè)密度剛好是細胞生長(cháng)的鼎盛期，因為細胞和細胞間都會(huì )有信號通路互相聯(lián)系，這個(gè)時(shí)候他們都共同商量好了要努力生長(cháng)，然后傳代之后，他們看到空間還是這么大，就會(huì )把努力生長(cháng)的精神一直傳承下去，直到他們過(guò)了生長(cháng)鼎盛期到生長(cháng)平頂期為止。當然有些貪婪的聚集成簇生長(cháng)的細胞，他們會(huì )不辭辛苦，日以繼日的生長(cháng)，直到培養基不能給他們提供一點(diǎn)養分為止。 

Step 3:不可忽略的重要的傳代過(guò)程：

1.37度水浴加熱*培養基，0.25% 胰蛋白酶/EDTA溶液，我們不建議在37度溫度下加熱試劑和培養基，水浴優(yōu)先使用。

2. 用DPBS沖洗細胞，并倒掉洗過(guò)的DPBS。

3. 加入1 ml 0.25% T/E溶液裝入T-25瓶中。輕輕搖動(dòng)燒瓶，以確保T/E溶液*覆蓋細胞。用顯微鏡觀(guān)察細胞形態(tài)的變化。

4.。在孵育期間，準備一個(gè)15毫升的錐形離心管與5ml胰酶中止液

5.在消化時(shí)，輕輕敲打培養瓶的側面，將細胞從表面剝離出來(lái)。在顯微鏡下檢查，確保所有的細胞間隙變大并且都開(kāi)始呈流沙狀脫落。

6.. 向培養瓶中加入5 ml胰酶中止液，將分離的細胞轉移到15ml離心管中。用另外5 mll胰酶中止液清洗培養瓶以收集殘留的細胞。

7.將15毫升離心管以1000 rpm離心5分鐘，收集消化好的細胞沉淀。

8.將細胞沉淀分別滴入我們要分瓶的容器里，完成傳代。