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細胞轉染技術(shù)原理及應用(瞬時(shí)轉染和穩定轉染)
發(fā)布時(shí)間: 2022-03-14 點(diǎn)擊次數: 1759次常規轉染技術(shù)可分為兩大類(lèi),一類(lèi)是瞬時(shí)轉染,一類(lèi)是穩定轉染(永(jiu)轉染)。前者外源DNA/RNA 不整合到宿主 染色體中,因此一個(gè)宿主細胞中可存在多個(gè)拷貝數,產(chǎn)生高水平的表達,但通常只持續幾天,多用于啟動(dòng)子和其它 調控元件的分析。
一般來(lái)說(shuō),超螺旋質(zhì)粒DNA 轉染效率較高,在轉染后24-72 小時(shí)內(依賴(lài)于各種不同的構建)分 析結果,常常用到一些報告系統如熒光蛋白,β 半乳糖苷酶等來(lái)幫助檢測。后者也稱(chēng)穩定轉染,外源DNA 既可以整 合到宿主染色體中,也可能作為一種游離體(episome)存在。
盡管線(xiàn)性DNA 比超螺旋DNA 轉入量低但整合率高。 外源DNA 整合到染色體中概率很小,大約1/104 轉染細胞能整合,通常需要通過(guò)一些選擇性標記,如來(lái)氨丙基轉移 酶(APH;新霉素抗性基因),潮霉素B 磷酸轉移酶(HPH),胸苷激酶(TK)等反復篩選,得到穩定轉染的同源細 胞系。
轉染技術(shù)的選擇對轉染結果影響也很大,許多轉染方法需要優(yōu)化DNA 與轉染 試劑 比例,細胞數量,培養及檢測 時(shí)間等。一些傳統的轉染技術(shù),如DEAE 右旋糖苷法,磷酸鈣法,電穿孔法,脂質(zhì)體法各有利弊,其主要原理及應 用特點(diǎn)見(jiàn)下表:
(各種轉染方法的比較) 除上述傳統方法外,近年來(lái)國際上推出了一些陽(yáng)離子聚合物基因轉染技術(shù),以其適用宿主范圍廣,操作簡(jiǎn)便對 細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。其中樹(shù)枝狀聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亞胺(Polyethylenimine, PEI)的轉染性能最佳,但樹(shù)枝狀聚合物的結構不易于進(jìn)一步改性,且其合成工藝復雜。
聚乙烯亞胺是一種具有較 高的陽(yáng)離子電荷密度的有機大分子,每相隔二個(gè)碳個(gè)原子,即每“第三個(gè)原子都是質(zhì)子化的氨基氮原子,使得聚合 物網(wǎng)絡(luò )在任何pH 下都能充當有效的“質(zhì)子海綿"(proton sponge)體。這種聚陽(yáng)離子能將各種報告基因轉入各種種 屬細胞,其效果好于脂質(zhì)聚酰胺,經(jīng)進(jìn)一步的改性后,其轉染性能好于樹(shù)枝狀聚合物,而且它的細胞毒性低。大量 實(shí)驗證明,PEI 是非常有希望的基因治療載體。
目前在設計更復雜的基因載體時(shí),PEI 經(jīng)常做為核心組成成分。線(xiàn) 型PEI(Line PEI,LPEI)與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI(Branched PEI,BPEI)要早一些,過(guò) 去的研究認為在不考慮具體條件,LPEI/DNA 轉染復合物的細胞毒性較低,有利于細胞定位,因此與BPEI 相比應該 轉染效率高一些。
但最近研究表明BPEI 的分枝度高有利于形成小的轉染復合物,從而提高轉染效率,但同時(shí)細胞 毒性也增大。超高分枝的、較柔性的PEI 衍生物含有額外的仲胺基和叔胺基,在染實(shí)驗中發(fā)現這種PEI 的毒性低, 但轉染效率卻較高。
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