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    多潛能干細胞的誘導

    發(fā)布時(shí)間: 2022-12-02  點(diǎn)擊次數: 832次

    簡(jiǎn)介

     

    多潛能干細胞(in-duced pluripotent stem cells,iPS)技術(shù)不僅可以解決胚胎干細胞來(lái)源引起的倫理問(wèn)題,而且自體 iPS 細胞可以避免異體來(lái)源胚胎干細胞移植引起的免疫排斥反應。目前就成體細胞誘導產(chǎn)生 iPS 細胞相關(guān)的幾種轉錄因子以及誘導方法、如何提高誘導產(chǎn)生 iPS 細胞的效率以及 iPS 細胞臨床應用方面都是在 Yamanaka 報道的誘導方案基礎上的改良。

     

    原理

     

    Yamanaka 法誘導多能干細胞的原理是把 Oct3/4,Sox2、c-Myc 和 Klf4 這四種轉錄因子基因克隆入病毒載體,然后引入小鼠成纖維細胞,發(fā)現可誘導其發(fā)生轉化,產(chǎn)生的 iPS 細胞在形態(tài)、基因和蛋白表達、表觀(guān)遺傳修飾狀態(tài)、細胞倍增能力、類(lèi)胚體和畸形瘤生成能力、分化能力等方面都與胚胎干細胞相似。

     

     

    材料與儀器

     

    器材:

    ① 37 ℃ 水浴鍋

    ② 一次性無(wú)菌培養皿

    ③ 一次性無(wú)菌移液管

    ④ T75 培養瓶

    ⑤ 涂有明膠的 6 孔板

    ⑥ 15 ml 離心管、注射器和針頭

    試劑:

     

    ① 材料:提前制備好的飼養層細胞

    ② DMEM 培養基

    ③ 胎牛血清

    ④ 谷酰胺

    ⑤ 非必需氨基酸

    ⑥ DF12 培養基

     

    ⑦ 血清替代物
    ⑧ 谷酰胺+2-巰基乙酉享溶液
    ⑨ b-FGF 溶液
    ⑩ β-巰基乙醇

     

    步驟

     

    多潛能干細胞的誘導的基本過(guò)程可分為如下幾步:

    (一)試劑配制


    (1)MEF 培養基的配制 DMEM 培養基,450 ml;胎牛血清(56 ℃ 熱滅活 30 min),50 ml;200 mmol/L-谷酰胺,5 ml;非必需氨基酸,5 ml。將所有組分混合后,用 0.22 μm 濾器過(guò)濾除菌,4 ℃ 保存,保持無(wú)菌。

    (2)胚胎干細胞培養基的配制 DF12 培養基,200 ml;血清替代物,50 ml;200 mmol/L-谷酰胺+2-巰基乙酉享溶液,1.25 ml;非必需氨基酸 100x 溶液,2.5 ml;b-FGF 溶液,5 ml。所有組分都加入 250 ml 培養瓶中,用 0.22 μm 濾器過(guò)濾除菌。培養基最好在 2 周內使用。

     

    (3)200 mmol/L-谷酰胺+2-巰基乙酉享溶液的配制。200 mmol/L-谷酰胺(使用前冷凍保存),5 ml;β-巰基乙醇,7 μl?;靹?。

    (4)b-FGF 的配制。b-FGF,10 μg;0.1% BSA 無(wú)菌,5 ml。溶解后按 0.5 ml 每份分裝,冷凍保存。

    (二)開(kāi)始前準備


    (1)小鼠胚胎成纖維細胞的獲得 通過(guò)同源重的方法將雙選擇標記系統,如βgeo(neo 用于 G418 篩選,βGal 用于顯影)基因盒,同源重組到小鼠 Nanog 基因位點(diǎn),使βgeo 受內源性 Nanog/O)ct 啟動(dòng)子控制,由于 Nanog 只在 ESC 中表達,所以來(lái)源于 Fbx 158geo / 3gco 小鼠的體細胞由于缺乏 ES 特性,不能在 G418 中生長(cháng)。按 MEF 制備方法,從 Fbx15βgeo/βgco 小鼠中分離培養 Fbx15βgea/βgeo 來(lái)源的 MEF。

    (2)經(jīng)典的「Yamanaka」法 OCT4,SOX2,KLF4,C-MYC 病毒的準備。

    (3)MEF 飼養層細胞的制備。

    (三)細胞誘導


    (1)感染前一天,將處于對數生長(cháng)期的 Fbx15 Pgco/βgeo 來(lái)源的 MEF 細胞鋪于 6 孔培養板,使感染時(shí)細胞達到 80% 的匯合。

    (2)按測定的病毒滴度,以 10 個(gè) pfμ/細胞加入適量濃縮病毒上清,用 MEF 培養基補齊至每個(gè)孔 2.5 ml 體積,再加入終濃度為 8 μg/ml 的 polybrene(聚凝胺),混合均勻。

    (3)棄去 Fbx15 βgeo/βgco 來(lái)源的 MEF 細胞的培養上清液,加入上步制備的病毒溶液,6 孔培養板每孔加 2.5 ml 的病毒溶液。37 ℃ 孵育 4 h 到過(guò)夜。

     

    (4)換新鮮胚胎干細胞培養基。

    (5)感染后 3 d,向培養基中添加終濃度為 0.3 mg/ml 的 G418。

    (6)每 2~3 天換新鮮胚胎干細胞培養基,添加終濃度為 0.3 mg/ml 的 G418,進(jìn)行克隆篩選,持續 2~3 周。

    (7)在培養過(guò)程中,觀(guān)察克隆形成情況。將其中與 ES 細胞形狀相似克隆按 ESC 培養方法擴增傳代,并進(jìn)行鑒定。

    (四)實(shí)驗結果及分析


    誘導成功的 iPS 需進(jìn)行多能性的鑒定,鑒定的內容包括以下幾方面。

    (1)形態(tài)學(xué)標準。

    (2)生長(cháng)特性。

     

    (3)發(fā)育潛能:2N 囊胚注射,獲得嵌合體病能通過(guò)生殖系遺傳給后代(形成三胚層細胞并能夠形成配子細胞遺傳給下一代);4N 囊胚注射,通過(guò)此方法獲得的小鼠,胚外組織來(lái)源于 4N 的細胞,而小鼠則全部來(lái)自 iPS 細胞。

    (4)標志分子表達。

    (5)表觀(guān)遺傳學(xué)特性。

     

     

    注意事項

     

    (1)目前已經(jīng)報道的轉錄因子的組合有很多,在 Yamanaka 四因子基礎上,還報道的組合有 OCT4,SOX2,NANOG 和 LIN28;OCT4,SOX2 和 KLF4;Sox2,c-Myc 和 Klf4;使用前冷凍保存。按 50 ml 分裝后冷凍保存,使用前融化。
    (2)目前用于過(guò)表達上述核心轉錄因子的手段有很多,包括反轉錄病毒載體,腺病毒載體,轉染質(zhì)粒,重組蛋白誘導方法,化學(xué)小分子 [例如 G9a 組蛋白甲基轉移酶的小分子抑制劑 BIX-01294(BIX)] 等。
    (3)對于提高誘導效率方面,MSC 作為誘導細胞其誘導成為 iPS 的效率較皮膚來(lái)源成纖維細胞的比率高:組蛋白脫乙?;敢种苿﹥任焖幔╒PA)和新報道的維生素- C 能顯著(zhù)提高 iPS 的誘導比率。
    (4)陽(yáng)性克隆的篩選方法包括報告基因篩選和形態(tài)學(xué)標準篩選。報告基因篩選方法是指用基因重組技術(shù)建立具有藥物抗性基因的小鼠成纖維細胞抗性受內源性 nanog 或()ct4 表達調控,通過(guò)壓力篩選,表達耐藥基因的克隆優(yōu)勢生長(cháng)。

     

     

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