養過(guò)細胞的小伙伴們肯定都知道，細胞養得好不好就看細胞傳代是的操作手法好不好了。因為懸浮細胞是可以不用消化直接離心收集沉淀就好，基本沒(méi)有操作難度。所以今天我們主要來(lái)聊一聊貼壁生長(cháng)的細胞的傳代操作方法。

      貼壁生長(cháng)的細胞當在培養瓶?jì)乳L(cháng)成致密的單層后，由于繼續生長(cháng)的空間不足，培養基中的營(yíng)養成份也消耗較多，同時(shí)代謝廢物也會(huì )增多時(shí)，即細胞密度長(cháng)到80%-90%時(shí)，則說(shuō)明需要對細胞進(jìn)行傳代操作來(lái)分瓶培養或者凍存處理。

      實(shí)驗室時(shí)內最-常用的傳代方法是胰酶消化法。一般細胞系和較常見(jiàn)的原代細胞都可以使用胰酶消化法來(lái)進(jìn)行細胞的消化處理。不過(guò)，這種方法對操作者的手法要求較高，畢竟如果消化不足吧，細胞下不來(lái)，或者細胞還是聚團狀的；消化過(guò)頭了吧，對于細胞的損傷較大，不利于細胞的長(cháng)期培養。那么，今天我們就來(lái)聊聊關(guān)于胰酶消化的那些事吧。

      首先，小伙伴們要做好實(shí)驗前的準備工作哦，要知道消化時(shí)間就那么幾分鐘，如果準備不充足，可能消化時(shí)會(huì )手忙腳亂嚴重的更是導致細胞消化過(guò)度呢。所以，我們來(lái)看看有哪些實(shí)驗前的準備工作要做吧。

      為了不刺激細胞，同時(shí)使胰酶的消化效率-最高，我們需要將消化時(shí)要用到的試劑，比如胰酶，終止液，培養基等，提前放入37℃水浴鍋內進(jìn)行預熱處理呢。

小伙伴們一定要加強自己的無(wú)菌意識。良好的無(wú)菌意識是細胞實(shí)驗成功的前提，所以我們要提前做好消毒措施。實(shí)驗前打開(kāi)超凈工作臺的紫外燈開(kāi)關(guān)，紫外消毒至少半小時(shí)。工作臺消好毒后，用75%酒精擦拭工作臺表面，點(diǎn)燃酒精燈，（注意酒精燈的火焰不能太小也不能太大，安全也很重要，不要燒到手），然后將預熱好的試劑（用75%的酒精擦拭試劑的表面，擦干，小心瓶口過(guò)火的時(shí)候未擦干的酒精燃燒）放入工作臺，同時(shí)準備好需要的一次性滴管，離心管之類(lèi)的耗材。正確擺放需使用的器械：保證足夠的操作空間，不僅便于操作而且可減少污染的概率。

      提前在離心管上寫(xiě)好細胞的名稱(chēng)并將胰酶中止液加入到離心管中，保證中止液的量是所加的胰酶的量的2-3倍。否則可能導致中止不完-全，細胞消化過(guò)度。

      準備工作做好了，就要開(kāi)始進(jìn)行細胞的消化了。消化的過(guò)程要做到忙而不亂，有序進(jìn)行操作。由于一般的消化時(shí)間也就只有2-5分鐘左右，所以操作時(shí)不能太慢，比如已經(jīng)看見(jiàn)細胞消化完-全了，結果操作時(shí)加入中止液用了30秒，那這樣的話(huà)則完-全無(wú)法避免細胞消化過(guò)度這種事情的發(fā)生了。當然，因為著(zhù)急怕細胞消化過(guò)度而導致忽略了無(wú)菌操作也是不可取的。

      消化之前用PBS洗滌一到兩遍，是常見(jiàn)的操作，因為培養基中的血清含有抑制胰酶的蛋白。小心吸出舊培養基，用PBS清洗（沖洗），然后加入適量消化液（胰蛋白酶液），一般來(lái)說(shuō)，細胞系的消化用0.25%的胰酶，而原代細胞的消化則需要用更溫和的0.05%的胰酶。注意消化液的量以蓋住細胞表面最好，一般T25瓶中加入1ml左右，T75瓶中加入3ml左右即可，最佳消化溫度是37℃。將加好胰酶的培養瓶放入培養箱中消化，記錄好消化時(shí)間。

      胰酶消化的程度是一個(gè)關(guān)鍵：消化過(guò)度則對細胞的活性損傷較大，并有部分細胞漂??；消化不足則細胞難于從瓶壁上吹下，反復吹打同樣也會(huì )損傷細胞活性。影響消化速度的因素較多，主要有胰酶溶液的活性（配制條件、凍存或4℃保存時(shí)間長(cháng)短、是否反復凍融、化凍后存放時(shí)間及溫度等）、消化時(shí)的溫度（氣溫、細胞培養瓶及胰酶溶液的溫度）以及所加胰酶溶液的多少等。

      而且細胞的消化時(shí)間是沒(méi)有一個(gè)準確的數值定論的，同一個(gè)細胞同一個(gè)人操作，第一次和第二次的消化時(shí)間也不盡相同，畢竟人操作的如擰緊瓶蓋，走路從工作臺到培養箱的時(shí)間等不可控的因素太多了。所以我們只能記錄一個(gè)大概的時(shí)間范圍，那么，下次再次消化這種細胞時(shí)可提前設定好時(shí)間，提前將消化的細胞拿出培養箱防止消化過(guò)度。

      一般書(shū)上都說(shuō)要在顯微鏡下觀(guān)察細胞：倒置顯微鏡下觀(guān)察消化細胞，若胞質(zhì)回縮，細胞之間不再連接成片，表明此時(shí)細胞消化適度。實(shí)際上當我們真的這樣操作時(shí)，可能細胞都有一點(diǎn)點(diǎn)消化過(guò)度。不是細胞全部成間隔分布很離散的單個(gè)圓形才算消化好了，一般你肉眼觀(guān)察貼壁細胞層，只要能移動(dòng)了，多半呈流沙狀移動(dòng)時(shí)，其實(shí)細胞的消化已經(jīng)可以了。很多人喜歡把細胞消化或者吹打成完-全分離細胞，這是沒(méi)有必要的。一般細胞呈流沙狀移動(dòng)了，說(shuō)明細胞與培養瓶的附著(zhù)已經(jīng)消失了，細胞之間的附著(zhù)也已經(jīng)消失了，說(shuō)明細胞已經(jīng)獨立分布了（雖然沒(méi)有呈現很廣的離散分布）。這個(gè)時(shí)候就應該停止消化，不要等到看到鏡下所有細胞都分離得非常好，間隙很大，才停止，這樣會(huì )導致細胞消化過(guò)度。細胞就是完-全成單個(gè)細胞懸液，之后在貼壁的過(guò)程中仍然會(huì )聚集，這個(gè)是貼壁培養的細胞，尤其是腫瘤細胞的一個(gè)特性，無(wú)論死的活的細胞都是如此。小伙伴們如果不信，可以在平時(shí)消化細胞的時(shí)候觀(guān)察觀(guān)察，也可以嘗試一下，準備100%的單個(gè)細胞懸液，貼壁后觀(guān)察細胞，仍然是幾個(gè)幾個(gè)細胞聚集在一起。一些懸浮培養的細胞也是如此，容易聚集生長(cháng)，所以不要去嘗試過(guò)幾個(gè)小時(shí)就把細胞拿出來(lái)吹打幾下，直到細胞分散成單細胞懸液（看到這里，有些小伙伴可能覺(jué)得很好笑，但是這個(gè)是初養懸浮細胞的小伙伴們經(jīng)常犯的錯誤，以為懸浮培養的細胞就是一個(gè)一個(gè)分開(kāi)的）。細胞只要能從基質(zhì)上脫離下來(lái)，即使這個(gè)時(shí)候是成片的（比如Calu-3細胞），吹打不超過(guò)20次后（一般10次即可），成小規模聚集（10個(gè)細胞左右），是正常的，不要試圖再去延長(cháng)消化時(shí)間，或者像有的同學(xué)那樣吹打1h，等待單細胞懸液出現，這樣會(huì )導致細胞消化過(guò)度，細胞裂解甚至死亡。    觀(guān)察到細胞脫落，那么就只剩下最后一步，細胞的消化就基本完成了。將消化好的細胞懸液加入到含中止液的離心管中，并用中止液潤培養瓶，中止細胞消化。同時(shí)，用滴管輕輕將已經(jīng)消化細胞吹打成細胞懸液。平衡后將離心管放入臺式離心機中，以1000轉/分鐘離心5分鐘，收集細胞沉淀，那么，細胞消化的過(guò)程就已經(jīng)完成，小伙伴們可以繼續接下來(lái)的傳代或者凍存的操作了。

      事實(shí)上，除了常見(jiàn)的胰酶消化外，也有許多小伙伴不用胰酶，只用EDTA，或者用胰酶/EDTA聯(lián)合作用的方式來(lái)進(jìn)行消化。但是，小伙伴們，你們要明白，胰酶的作用是切斷細胞與培養基質(zhì)之間的一些負責粘連和附著(zhù)的蛋白，而EDTA則是通過(guò)螯合Ca離子，從而作用于Integrin的活性，來(lái)使細胞與培養基質(zhì)分離。所以綜合而言，EDTA的作用更加溫和。當然也有一些人在胰酶里添加一些EDTA，或者在對付特別難消化的細胞，添加多一些EDTA，也是同樣的道理。注意EDTA是不能被血清中和的，使用EDTA消化細胞后原先的培養瓶要徹-底清洗，否則再培養時(shí)細胞容易貼壁不牢。

      在遇到特別難消化的細胞，小伙伴們不要試圖通過(guò)延長(cháng)消化時(shí)間（如果10min還消化不徹-底的話(huà)）的方法來(lái)使消化完-全，而應該想想其它辦法。消化比較難消化的細胞時(shí)，注意需要用不含Ca，Mg離子的DPBS來(lái)進(jìn)行潤洗，因為這些離子也會(huì )抑制胰酶的活性。同時(shí)一般可以先用少量胰酶進(jìn)行孵育再來(lái)進(jìn)行消化，但也不需要加入很多胰酶，一般來(lái)說(shuō)100 mm皿，一次最多加入500ul胰酶來(lái)孵育就已經(jīng)足夠了。通常來(lái)說(shuō)，對于難消化的細胞，使用這樣的消化手法，一般不超過(guò)5min，就可以看見(jiàn)細胞成流沙狀移動(dòng)，這時(shí)即應該停止消化。

      當然，當在顯微鏡下看見(jiàn)貼壁的細胞成片或者聚團生長(cháng)時(shí)，不要以為成片分布是自己沒(méi)養好，消化的時(shí)候沒(méi)有消化完-全，這個(gè)要視細胞而定。如果和標準形態(tài)不一致，那有可能是自己沒(méi)消化好導致的，但如果消化方法正確，也觀(guān)察到細胞消化完-全了，卻仍然成片分布，甚至完-全吹打成單細胞懸液，細胞在貼壁后仍然成片分布，那么可以肯定這是細胞的特性，是因為貼壁過(guò)程中重新聚集了。這個(gè)時(shí)候你拼了命要去讓它均勻分布，你的細胞之后會(huì )越來(lái)越不好，甚至導致細胞的死亡。

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