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    原代細胞培養技術(shù)

    發(fā)布時(shí)間: 2024-01-30  點(diǎn)擊次數: 365次

    原代細胞培養的應用

    1. 為研究生物體細胞的生長(cháng)、代謝、繁殖提供有力的手段;

    2. 為傳代培養創(chuàng )造條件;

    3. 服務(wù)于臨床實(shí)踐,用于藥物篩選等。


    原代細胞培養之取材

    取材作為原代細胞培養過(guò)程中的第一部至關(guān)重要,以下幾種取材技術(shù),你都用過(guò)哪些方法呢?

    各類(lèi)組織取材,操作及注意事項:

    1.皮膚和黏膜

      主要取皮片,面積一般2~4平方厘米


    2.內臟和實(shí)體瘤

    1. 無(wú)菌環(huán)境;

    2. 熟悉所需組織的類(lèi)型和部位;

    3. 要避開(kāi)破潰、壞死液化部分,以防污染,盡量去除混雜的結締組織。


    3.血液細胞

      一般多抽取靜脈外周血,或從淋巴組織中(如脾、扁桃體、胸腺、琳巴結等)分離細胞,取材時(shí)應注意抗凝。


    4.骨髓、羊水、胸/腹水

      嚴格無(wú)菌,注意抗凝,還要盡快分離培養,離心后,用鈣、鎂PBS洗兩次,再用培養液洗一次后即可培養,不易低溫存放。


    5.動(dòng)物組織取材-鼠胚組織

    1. 用引頸或氣管窒息致死法處死孕期合適和動(dòng)物;

    2. 將其浸泡在含有75%酒精的燒杯中,5分鐘后去除動(dòng)物;

    3. 在消毒過(guò)的木板上可用無(wú)菌的圖釘或大頭針固定四肢,切開(kāi)皮膚;

    4. 用無(wú)菌操作法解剖取胚。


    6.動(dòng)物組織取材-幼鼠胚腎(或肺)

      幼鼠采用上述方法處死消毒后,腹部朝上固定在木板上,先切開(kāi)游離毛皮并拉開(kāi)至兩側,采用無(wú)菌法打開(kāi)胸腔取肺,或從背部打開(kāi)腹腔取腎。


    7.雞(鴨)鳥(niǎo)類(lèi)胚胎組織

    1)取孵化至適當胚齡(9~12天)的胚蛋,用照蛋燈在暗處燈檢,若有豐富血管、胚體有運動(dòng)的胚蛋,說(shuō)明胚體發(fā)育良好,并用有色筆劃出氣室和配體位置;

    2)將胚蛋置于蛋架上,先用溫水清洗蛋殼,再用75%酒精棉球擦干;

    經(jīng)碘酒、75%酒精消毒后,在無(wú)菌條件下采用無(wú)菌法用剪刀或鑷子打開(kāi)氣室,沿氣室邊緣去除蛋殼;

    3)用眼科鑷撕去殼膜,暴露出雞胚;

    4)用彎頭鑷輕挑起胚頭,取出胚胎,放入無(wú)菌平皿中,解剖取材;


    原代細胞培養之分離注意事項

    1.組織塊培養法

    1)組織塊接種后的前3天,在觀(guān)察和移動(dòng)的過(guò)程中,注意不要引起液體的振蕩。要避免經(jīng)常翻動(dòng)和振動(dòng),否則組織塊不易附著(zhù)于瓶壁上或附著(zhù)后也會(huì )脫落飄起。


    2)加入的培養液不宜過(guò)多,避免浸泡的組織塊受輕微的波動(dòng)而脫落下來(lái)。


    3)當細胞向外遷徙出來(lái)后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞,它們產(chǎn)生的有毒物質(zhì)會(huì )影響原代細胞的生長(cháng)。


    4)為促進(jìn)組織塊盡快粘貼在培養瓶皿上,可以在種植前先將膠原薄層涂在培養瓶底壁上。


    2.貼壁型原代細胞

    1)原代培養的分離細胞在初次接觸體外環(huán)境時(shí),它們之間會(huì )相互影響,在這些細胞之間能產(chǎn)生一些促生長(cháng)的活性物質(zhì),使細胞彼此互相促進(jìn)存活和生長(cháng)。如果接種的細胞密度過(guò)低,細胞之間的促生長(cháng)作用很小,也很難使細胞適應從體內的組織環(huán)境到被分散后進(jìn)入獨立生存環(huán)境的變化過(guò)程。如果接種的細胞密度過(guò)大,會(huì )導致?tīng)I養物質(zhì)供應不足,代謝廢物積累較快需要經(jīng)常換液和傳代。


    2)適當增大原代培養接種的細胞密度,給培養的細胞提供更多的類(lèi)似于在體內時(shí)細胞之間的相互作用,會(huì )極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環(huán)境后進(jìn)行傳代培養時(shí)再以較低的密度接種和培養。


    3)盡快使接種的細胞貼壁,是決定培養能否成功的關(guān)鍵??梢栽诮臃N后先將培養瓶置培養箱內培養3h到5h,待細胞貼壁后,再補足培養液繼續培養。


    3.懸浮型原代細胞

    1)必須保持細胞的懸浮狀態(tài)??梢酝ㄟ^(guò)增加培養液的黏度來(lái)幫助細胞呈懸浮狀態(tài),如給培養液中加入低濃度的透明質(zhì)酸復合物。在有攪拌裝置的培養皿內加入培養液,以5ml為最淺限度,否則攪拌時(shí)會(huì )產(chǎn)生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過(guò)快,否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下,可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時(shí)要注意不要吸出細胞。


    2)能夠進(jìn)行懸浮培養的細胞,其生命力一般都比較旺盛,體外分裂增殖的速度較快,營(yíng)養成分消耗大,換液時(shí)間隔一般較短。


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