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    學(xué)會(huì )這6步,輕松搞定transwell實(shí)驗

    發(fā)布時(shí)間: 2021-11-02  點(diǎn)擊次數: 1880次
    做腫瘤研究的人,很少有不知道 transwell 實(shí)驗的,它是用來(lái)研究腫瘤細胞的遷移侵襲轉移情況的一種簡(jiǎn)便快捷的實(shí)驗方法,還可以構建兩種細胞的共培養體系以及趨化性試驗。今天咱們就來(lái)講講怎么做腫瘤細胞的侵襲轉移實(shí)驗。



    Transwell 侵襲實(shí)驗,其實(shí)原理簡(jiǎn)單地說(shuō),就是用一層膜將高營(yíng)養的培養液和低營(yíng)養的培養液隔開(kāi),細胞放在低營(yíng)養的培養液里,為了找吃的,細胞會(huì )往高營(yíng)養的培養液里面跑,但是有膜擋著(zhù),所以要穿過(guò)膜才行。

    我們在膜上涂上一層基質(zhì)膠,模仿細胞外基質(zhì),于是細胞就要分泌金屬蛋白酶將基質(zhì)消化了才可以從低營(yíng)養的培養液跑到高營(yíng)養的培養液里面,最后我們檢測高營(yíng)養的培養液里細胞量就可以知道細胞的侵襲能力了。而遷移實(shí)驗就是不鋪膠直接讓細胞穿過(guò)就行了。

    圖片
    Transwell 簡(jiǎn)易圖

    以下就來(lái)為大家介紹侵襲實(shí)驗步驟:




    實(shí)驗前準備:transwell 小室(一般選用 12um),24 孔板,基質(zhì)膠(corning),細胞實(shí)驗所需的基本的材料。

     

    1

        
    基質(zhì)膠鋪板

    用 Matrigel 1:8 稀釋?zhuān)梢灾苯佑脽o(wú)血清的培養基稀釋?zhuān)?,包?Transwell 小室底部膜的上室面,置 37℃孵箱 1-4h 使 Matrigel 聚合成凝膠(時(shí)間不宜太長(cháng),之前有人說(shuō)在 37 度孵箱過(guò)夜,反正元元師兄覺(jué)得不太可能)。




    注意事項:




    1. 鋪膠之前將槍頭以及所用的耗材至于冰箱 4 度當中,否則配膠的時(shí)候會(huì )直接凝固。
    2. 鋪膠的厚度自己摸索,25ul,40ul,100ul。
    3. 注意鋪膠過(guò)程不要產(chǎn)生氣泡,鋪膠均勻,否則影響實(shí)驗結果。
    4. 注意無(wú)菌操作。

     

    2

        
    制作細胞懸液

    1. 制備細胞懸液前可先讓細胞撤血清饑餓 12-24h,進(jìn)一步去除血清的影響。但這一步并不是必須的。
    2. 消化細胞,終止消化后離心棄去培養液,(用 PBS 洗 1-2 遍,這一步很必要,否則細胞表面覆有血清培養基,細胞沒(méi)有遷移侵襲的動(dòng)力),用無(wú)血清培養基重懸。

     

    3

        
    接種細胞

    1. 細胞懸液 200µl 加入 Transwell 小室(腫瘤細胞數目需要摸濃度,從 2 萬(wàn),5 萬(wàn),10 萬(wàn))。
    2. 24 孔板下室一般加入 600µl 含 15%FBS 的培養基,特別注意的是,下層培養液和小室間常會(huì )有氣泡產(chǎn)生,一旦產(chǎn)生氣泡,下層培養液的趨化作用就減弱甚至消失。在種板的時(shí)候要特別留心,一旦出現氣泡,要將小室提起,去除氣泡,再將小室放進(jìn)培養板。
    3. 養細胞:常規培養 12-48h(主要依癌細胞侵襲能力而定)。24h 較常見(jiàn),時(shí)間點(diǎn)的選擇除了要考慮到細胞細胞侵襲力外,處理因素對細胞數目的影響也不可忽視。

     

    4

        
    固定染色

    取出 Transwell 小室,棄去孔中培養液,用無(wú)鈣的 PBS 洗 2 遍,用棉簽輕輕擦掉上層未遷移細胞,甲醇或者甲醛固定 30 分鐘,將小室適當風(fēng)干。用 0.1% 結晶紫染色 30-60 min,用 PBS 洗 3 遍。用棉簽輕輕擦掉上室水分。

     

    5

        
    計數

    400 倍顯微鏡下隨即五個(gè)視野觀(guān)察細胞,記數。




    如果細胞怎么還是穿不過(guò)去??偨Y一下幾個(gè)原因:
    1.  細胞不具備侵襲轉移的能力(例如 MCF7 為非轉移性的細胞)
    2.  基質(zhì)膠鋪的太厚了 (基質(zhì)膠的稀釋倍數是可以改的,基質(zhì)膠的量是可以摸的)
    3.  細胞給的量太少了(200ul 里 2 萬(wàn)細胞太少,給 5 萬(wàn),10 萬(wàn),20 萬(wàn)唄)
    4.  細胞沒(méi)有進(jìn)行預處理(這步可以免),也沒(méi)有用 PBS 洗兩遍 (這一步不可省,因為你用胰酶消化后,含血清的培養基中和,必須洗干凈了。
    5.  上層的培養基為無(wú)血清培養基,下室的培養基為 15% 的血清培養基,這個(gè)濃度可以改成 20%,細胞數不夠,底下的吸引力也不夠不行哈。
    6.  細胞的活性太差,半死不活的細胞做侵襲實(shí)驗傷不起哈。



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