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    載體構建及原核表達

    發(fā)布時(shí)間: 2024-01-12  點(diǎn)擊次數: 491次

    實(shí)驗目的:

    基因表達是生物學(xué)研究中的重要內容之一,而基因表達載體則是基因表達研究中十分重要的工具?;虮磉_載體是一種能夠將外源基因導入到細胞中并使其表達的DNA分子。在細胞內,基因表達載體可以通過(guò)轉錄和翻譯的過(guò)程將外源基因轉化為蛋白質(zhì),從而實(shí)現基因表達。


    實(shí)驗原理:

    表達載體是用來(lái)在受體細胞中表達外源基因的載體,原核表達載體通常為質(zhì)粒,表達載體除具有克隆載體所具有的性質(zhì)以外,還應具有表達元件(轉錄和翻譯所必須的DNA序列)。

          大腸桿菌表達載體要求:①有一個(gè)強的啟動(dòng)子及其兩側的調控序列;②應有SD序列,且SD序列與起始密碼子ATG之間要有合適的距離;③在克隆基因與啟動(dòng)子之間有正確的閱讀框架;④外源基因下游應加入不依賴(lài)ρ因子的轉錄終止區。

    構建好表達載體之后,提取重組載體的質(zhì)粒,然后用質(zhì)粒進(jìn)行表達宿主菌的轉化。


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    實(shí)驗步驟:

    1.目的片段的獲取

    1.1引物設計

    NCBI上查找目的基因SD序列,使用Primer 5軟件進(jìn)行引物的設計,在設計引物時(shí)須引入合適的酶切位點(diǎn)和保護性堿基,具體可查看本公眾號分享的引物設計。

    1.2 PCR擴增(以Q5酶擴增為例)

    PCR體系(25 μl):


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    2.目的片段和表達載體的連接(以T4連接為例)

    PCR程序:


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    1.3 瓊脂糖凝膠電泳

          根據目的條帶大小配置相應濃度的瓊脂糖凝膠,微波爐加熱,全部溶解后,冷卻至60℃左右,按照1:10000加入核酸染料,混勻后倒入凝膠鑄槽中,插入梳子,除去氣泡,待全部凝固后拔出梳子。

    將凝膠置于電泳槽中,加樣孔放置于負極,進(jìn)行加樣(選取合適的DNA Marker),根據DNA Marker指示條帶在凝膠上的位置決定電泳是否終止,然后將凝膠放置在凝膠成像儀中切膠回收。


    2.目的片段和表達載體的連接(以T4連接為例)

        不同的表達載體具有不同的優(yōu)勢,在分析基因序列之后可以選擇最佳的表達系統進(jìn)行重組表達質(zhì)粒構建。因科研需求,需要pET系列、pGEX系列、pCold(BL21分子伴侶)系列等原核表達載體。

    2.1 載體及PCR產(chǎn)物雙酶切

    選擇合適的酶切位點(diǎn),對目的片段和表達載體進(jìn)行酶切反應。

    a. 膠回收產(chǎn)物酶切:37℃ 1 h


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    b. 連接載體酶切:37℃ 1 h



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    酶切產(chǎn)物跑瓊脂糖凝膠電泳,UVP觀(guān)察,用刀片切下目的條帶,參照膠回收試劑盒說(shuō)明書(shū)回收目的片段。

    2.2 連接反應

    將膠回收得到的酶切PCR產(chǎn)物和酶切載體進(jìn)行連接,T4 DNA ligase 16/4℃過(guò)夜,連接體系如下:圖片


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    3.目的蛋白的表達

    3.1 連接產(chǎn)物轉化并挑取陽(yáng)性克隆質(zhì)粒

    a.從-80℃取出感受態(tài)細胞,放在冰上融化;

    b.將10μL連接產(chǎn)物全部加入到50 μL感受態(tài)細胞中,輕輕混勻,冰浴30 min;

    c.將EP管放在42℃熱激1 min 30 s,速置冰中3 min;

    d.向EP管中加入440 μL無(wú)抗的液體LB,置于搖床上37℃220 rpm培養1 h;

    e.取適量活化后菌液均勻涂布于含抗性(與載體上抗性基因一致)的固體LB培養基上,于37 ℃恒溫培養箱中倒置12-16 h;

    f.轉化后挑取陽(yáng)性克隆質(zhì)粒,經(jīng)測序鑒定無(wú)誤后進(jìn)行后續誘導表達實(shí)驗。

    3.2 提取質(zhì)粒轉化BL21

    a.將鑒定正確的表達重組質(zhì)粒轉化BL21感受態(tài)細胞(和轉化同理);

    b.挑取單菌落接種至含抗性(與載體上抗性基因一致)的液體LB培養瓶中,置于搖床上37 ℃ 220 rpm培養過(guò)夜;

    c.將過(guò)夜培養的菌液以1:100的比例接種于含抗性(與載體上抗性基因一致)的液體LB培養瓶中擴大培養;

    d.待OD600=0.6-0.8時(shí),取1mL菌液作為未誘導全菌樣品對比,并向剩余菌液中加入終濃度為0.5 mM的IPTG,置于搖床上低溫180 rpm誘導過(guò)夜。

    3.3 超聲破碎菌液

    a.從過(guò)夜誘導后的菌液中取1mL作為誘導后全菌樣品對比,收集剩余菌液離心(8000 rpm,20 min,4℃)棄上清用PBS重懸濃縮(濃縮比例約10:1);

    b.超聲破碎(超聲4 s,停歇7 s)至透亮,結束后離心(10000 rpm,30min,4℃)分別收集上清和沉淀,將其作對照組取樣;

    c.取誘導前全菌,誘導后全菌,誘導后上清,誘導后沉淀各40μL,加入10 μL 5×loading buffer,于99℃變性20min,進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析。

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