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    原代細胞培養和傳代培養的方法

    發(fā)布時(shí)間: 2021-07-07  點(diǎn)擊次數: 1176次
    原代培養
    原理
    將動(dòng)物機體的各種組織從機體中取出,經(jīng)各種酶(常用胰蛋白酶)、螯合劑(常用 EDTA)或機械方法處理,分散成單細胞,置合適的培養基中培養,使細胞得以生存、生長(cháng)和繁殖,這一過(guò)程稱(chēng)原代培養。
    儀器、材料及試劑
    儀器:培養箱(調整至 37℃),培養瓶、青霉素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、紗布、手術(shù)器械、血球計數板、離心機、水浴箱(37℃)
    材料:動(dòng)物組織塊
    試劑:1640 培養基(含 20%小牛血清或胎牛血清),0.25%胰酶,Hank′s 液,碘酒
     
    初代消化培養法
    1. 準備:取各種已消毒的培養用品置于凈化臺面,紫外線(xiàn)消毒 20 分鐘。開(kāi)始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。
    2. 布局:點(diǎn)燃酒精燈,安裝吸管帽。
    3. 處理組織:把組織塊置于燒杯中,用 Hanks 液漂洗 2~3 次,去除血污;如懷疑組織可能污染,可先置于含有青鏈霉素的混合液中 30~60 分鐘。
    4. 剪切:用眼科剪把組織切成 2~3 毫米大小的塊,以便于消化。加入比組織塊總量多30~50 倍的胰蛋白酶液,然后一并倒入三角燒瓶中,結扎瓶口或塞以膠塞。
    5. 消化:或用恒溫水浴,或置于 37℃溫箱消化均可,消化中每隔 20 分鐘應搖動(dòng)一次,如用電磁恒溫攪拌器消化更好。消化時(shí)間依組織塊的大小和組織的硬度而定。
    6. 分離:在消化過(guò)程中見(jiàn)消化液發(fā)混濁時(shí),可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀(guān)察,如組織已分散成細胞團或單個(gè)細胞,立即終止消化,隨即通過(guò)適宜不銹鋼篩,濾掉尚未充分消化開(kāi)的組織塊。低速(500~1000 轉/分)離心消化液 5 分鐘,吸出上清,加入適量含有血清的培養液。
    7. 計數:用計數板計數,如細胞懸液細胞密度過(guò)大,再補加培養液調整后,分裝入培養瓶中。對大多數細胞來(lái)說(shuō),pH 要求在 7.2~7.4 范圍,培養液呈微紅色,如顏色偏黃,說(shuō)明液體變酸,可用NaHCO3 調整。
    8. 培養:置于 36.5℃溫箱培養,如用 CO2 溫箱培養,瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽堵塞,紗布塞易生霉菌,每次換液時(shí)需要換新塞。
     
    初代組織塊培養法
    1. 剪切:把組織小塊置于小燒杯或青霉素小瓶中,用 Hanks 液漂洗二三次以去掉表面血污,吸靜 Hanks 液,用眼科剪反復剪切 1mm3 塊為止。
    2. 擺布:用彎頭吸管吸取若干小塊,置于培養瓶中,用吸管彎頭把組織小塊擺布在培養瓶底部,小塊相互距離以 0.5cm 為宜,每一 25ml 培養瓶底可擺布 20~30 塊。
    3. 輕輕翻轉培養瓶,另瓶底向上,注意翻瓶時(shí)勿另組織小塊流動(dòng),塞好瓶塞,置 36.5℃溫箱培養 2 小時(shí)左右(勿超過(guò) 4 小時(shí)),使小塊微干涸。
    4. 培養:從微箱中取出培養瓶,開(kāi)塞,46 度斜持培養瓶,箱瓶底腳部輕輕注入培養液少許,然后緩緩再把培養瓶翻轉過(guò)來(lái),讓培養液慢慢覆蓋附于瓶地上的組織小塊。置溫箱中靜止培養。待細胞從組織塊游出數量增多后。再補加培養液。
     
     
    傳代培養法
    原理
    細胞在培養瓶長(cháng)成致密單層后,已基本上飽和,為使細胞能繼續生長(cháng),同時(shí)也將細胞數量擴大,就必須進(jìn)行傳代(再培養)。 傳代培養也是一種將細胞種保存下去的方法。同時(shí)也是利用培養細胞進(jìn)行各種實(shí)驗的必經(jīng)過(guò)程。懸浮型細胞直接分瓶就可以,而貼壁細胞需經(jīng)消化后才能分瓶。
    材料和試劑
    1. 細胞:貼壁細胞株
    2. 試劑:0.25%胰酶、1640 培養基(含 10%小牛血清或胎牛血清)
    3. 儀器和器材:倒置顯微鏡,培養箱、培養瓶、吸管、廢液缸等
     
    操作步驟
    1. 吸除培養瓶?jì)扰f培養液。
    2. 向瓶?jì)燃尤胍鹊鞍酌负?EDTA 混合液少許,以能覆滿(mǎn)瓶底為限。
    3. 置溫箱中 2~5 分鐘,當發(fā)現細胞質(zhì)回縮,細胞間隙增大后,立即終止消化。
    4. 吸除消化液,向瓶?jì)茸⑷?Hanks 液數毫升,輕輕轉動(dòng)培養瓶,把殘余消化液沖掉。注意加 Hanks 液沖洗細胞時(shí),動(dòng)作要輕,以免把已松動(dòng)的細胞沖掉流失,如用胰蛋白酶液?jiǎn)为毾?,吸除胰蛋白酶液后,可不?Hanks 液沖洗,直接加入培養液。
    5. 用吸管吸取營(yíng)養液輕輕反復吹打瓶壁細胞,使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。
    6. 計數板計數后,把細胞懸液分成等份分裝入數個(gè)培養瓶中,置溫箱中培養。
     
    無(wú)菌操作注意事項
    1. 操作前要洗手,進(jìn)入超凈臺后手要用 75%酒精或 0.2%新潔爾滅擦試。試劑等瓶口也要擦試。
    2. 點(diǎn)燃酒精燈,操作在火焰附近進(jìn)行,耐熱物品要經(jīng)常在火焰上燒灼,金屬器械燒灼時(shí)間不能太長(cháng),以免退火,并冷卻后才能夾取組織,吸取過(guò)營(yíng)養液的用具不能再燒灼,以免燒焦形成碳膜。
    3. 操作動(dòng)作要準確敏捷,但又不能太快,以防空氣流動(dòng),增加污染機會(huì )。
    4. 不能用手觸已消毒器皿的工作部分,工作臺面上用品要布局合理。
    5. 瓶子開(kāi)口后要盡量保持 45℃斜位。
    6. 吸溶液的吸管等不能混用。
     
     
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